Lamiae
Sommaire: Etude d’activités biologique des deux espèces Ammoides atlantica et Ranunculus bulbosus
Introduction
Chap 01
I-1-Introduction
I-2-Flavonoïdes, Distribution, Classification
I-2-1- Classification des flavonoïdes selon la composition chimique
-a-Flavones, Flavonols
-b- Flavanones et dihydroflavonols
-c- Biflavonoïdes
-d- Chalcones, aurones
-e-Les anthocyanes
Références bibliographiques
Chap 02
II. 1. L’activité antioxydante des flavonoïdes
II.2. L’activité antimicrobienne des flavonoïdes
II. 3. L’inhibition des enzymes
II.4. Activité antifongique
II.5. l’activité antiulcéreux
II.6. l’activité anticancéreuse
II.7. l’activité anti-inflammatoire
II.8. L’activité antibactérienne
II.8.1- Introduction
II.8.2- La découverte du monde microbien
II.8.3- Rôle des microorganismes dans les maladies
II.8.4- L’infection
II.8.5- Morphologie et Structure fine des bactéries
II.8.6- Bactériologie médicale
II.8.6.a- bactéries à gram négatif
II.8.6.a-1- Genre Pseudomonas
II.8.6.a-2- Genre Acinetobacter
II.8.6.a-3- Famille des Entérobactéries
II.8.6.b-bactéries à gram positif
II.8.6.b-1- Genre Staphylococcus
II.8.6.b-2- Les Streptocoques
II.8.7- Les Antibiotiques
II.8.6.1- Introduction
II.8.6.2- Définition
II.8.6.3- Une découverte très ancienne
II.8.6.4- Les premiers agents antibactériens
II.8.6.5- La pénicilline
II.8.6.6- Mode d’action des antibiotiques et Résistance bactérienne
Bibliographie
Chap 03
III. L’étude chimique des deux espèces
III.1. L’étude chimique de l’espèce: Ammoides atlantica
III. 1. 1. La matière végétale
III. 1. 2. Description botanique de la plante
III. 1. 3. Place dans la systématique
III. 1.4. Extraction
III. 1.5. Séparation chromatographique des deux extraits (AcOEt) et butanol
III. 2. L’étude chimique de l’espèce Ranunculus bulbosus
III.2.1. La matière végétale
III. 2.2 Description botanique de la plante
III.2.3. Place dans la systématique
III. 2.4. Extraction
Bibliographie
Chap 04
IV. Tests biologiques
IV.1.Activité anti inflammatoire
IV.1.1. Méthode : œdème à la carragénine chez la souris selon Levy
IV.1.2. Préparation des solutions
IV.1.2.1. Préparation de l’Acide acétyle Salicylique (ASS)
IV.1.2.2. Préparation de l’eau physiologique
IV.1.2.3. Préparation de solution de carragénine
IV.1.3. Protocole expérimental
IV.1.3.1. Constitution des lots
IV.1.3.2. les administrations
IV.1.3.2.1. administrations des substances à tester (lots test)
IV.1.3.2.2. administrations de l’Acide acétyle Salicylique (lots référence)
IV.1.3.2.3. administrations du témoin (lots test)
IV.1.3.2.4. injection de la carragénine (tous les lots)
IV.1.3.2. injection intra plantaire de l’eau physiologique (tous les lots)
IV.1.3.3. sacrifice des animaux
IV.1.3.4. peser les pattes
IV.1.3.5. Calcule du pourcentage d’inhibition
IV.1.3.6. Résultats
IV.1.3.6.1. Identification de l’essai : lot Témoin
IV.1.3.6.2. Identification de l’essai : lot de référence
IV.1.3.6.3. Identification de l’essai: lot 01
IV.1.3.6.4. Identification de l’essai : lot 02
IV.1.3.6.5. Identification de l’essai : lot 03
IV.1.4. Discussions
IV.2. Activité antibactérienne
IV.2.1. Protocole du test d’activité antibactérienne des extraits
IV.2.1.1. Préparation des disques de papiers buvard
IV.2.1.2. Préparation du témoin
IV.2.1.3. Préparation de la suspension des souches de référence
IV.2.1.3.1. Souches cibles utilisées
IV.2.1.3.2. Origine
IV.2.1.3.3. Vérification de la pureté des souches
IV.2.1.4. Inoculum
IV.2.1.5. Contrôle de l’inoculum
IV.2.1.6. Ensemencement
IV.2.1.7. Application des disques
IV.2.1.8. Lecture
IV.2.2. Résultats
IV.3. Activité antifongique
IV.3.1. Protocole du test d’activité antifongique des extraits
IV.3.2. Protocole expérimental
IV.3.3. Résultats
IV.3. Activité anti-oxydante
IV.3. 1. Détermination de l’activité anti-radicalaire de l’extrait méthanolique de Ammoides atlantica par la méthode de DPPH (effet scavenger)
IV.3. 1. 1. Le protocole expérimental
IV.3. 2. Résultats et discussions
Bibliographie
Conclusion générale
Extrait du mémoire étude d’activités biologique des deux espèces Ammoides atlantica et Ranunculus bulbosus
chapitre I: les flavonoïdes
I.1. Introduction
Le mot « flavonoïde » a été introduit en 1952 par HINREIER pour désigner tous les pigments ayant un squelette C6-C3-C analogue à celui des flavones, lui-même dérivant du Latin flavus qui signifie jaune [9].
Les flavonoïdes sont presque toujours hydrosolubles, ils sont responsables de la coloration des fleurs, des fruits, et parfois des feuilles. Tel est le cas des flavonoïdes jaunes (chalcones, aurones, flavonols jaunes), des anthocyanosides rouges, bleus ou violets. Quand ils ne sont pas directement visibles, ils contribuent à la coloration par leur rôle de copigment: tel est le cas des flavones et des flavonols incolores co-pigmentant et protégeant les anthocyanosides [10].
Dans certains cas, la zone d’absorption de la molécule est située dans le proche ultraviolet : la coloration n’est alors perçue que par les insectes qui sont ainsi efficacement attirés et guidés vers le nectar et donc contraints à assurer le transport du pollen, condition de la survie de l’espèce végétale [10].
Les flavonoïdes sont également présents dans la cuticule foliaire et dans les cellules épidermiques des feuilles, assurant ainsi la protection des tissus contre les effets nocifs du rayonnement ultraviolet.
I.2. Flavonoïdes, Distribution, Classification
L’étude des Flavonoïdes a suscité notre intérêt, du fait de leur intérêt pharmacologique, de leurs nombreuses implications dans des domaines biologiques et de leur diversité structurale (plus de 4000 structures flavoniques identifiées à l’heure actuelle) [11].
Ils constituent l’un des grands groupes de phénols, et sont des constituants caractéristiques des plantes vertes à l’exception des algues [12].
On signale qu’environ 2% du carbone photosynthétique global sont incorporés dans la biosynthèse flavonique [11-12].
Abondants dans les plantes supérieures, on les rencontre essentiellement dans les feuilles et les fleurs. Mais ils sont également signalés dans les racines, le bois, l’écorce, le pollen, le nectar, les baies et les grains [12]. Leur concentration dans la cellule végétale excède souvent 1µM [13].
Très répandus dans les végétaux, les flavonoïdes existent sous forme de combinaisons, les plus fréquentes étant les hétérosides [9]. Ainsi, les flavonoïdes glycosylés se trouvent principalement dans les vacuoles et leurs aglycones sont présents dans les zones lipophiles,
comme les glandes (à sécrétion) huileuses ou les couches de cire [13], telles les glandes de l’odorat du castor, la propolis (abeilles à sécrétion), et les ailes des papillons. Quant à leurs aglycones O-méthylés on les trouve dans le cytoplasme [14].
On peut les rencontrer aussi dans les chloroplastes des feuilles des plantes supérieures [15]. Comme il est possible de les localiser fixés sur les hémi–cellules des parois cellulaires [16].
Les génines sont des dérivés polyhydroxylés, parfois méthoxylés ou méthylés de la chromone ou benzol γ–pyrone, Fig. 1 [17].
………
Si le lien ne fonctionne pas correctement, veuillez nous contacter (mentionner le lien dans votre message)Etude d’activités biologique des deux espèces Ammoides atlantica et Ranunculus bulbosus (1.2 MO) (Rapport PDF)
