Les UV et le potentiel de conservation poste-récolte des fruits et légumes

Les UV, la croissance des plantes et la machinerie photosynthétique

Le développement des plantes est possible grâce à la présence de la couche d’ozone qui joue le rôle d’un écran vis-à-vis des rayonnements UV au niveau de la stratosphère. Cette couche, en jouant le rôle d’un filtre à UV, absorbe les rayons solaires UV-C et une partie des rayonnements UV-B. Une des conséquences de l’application des rayons UV sur les plantes, est la génération du stress oxydatif (Costa et al., 2002) suite à la formation des espèces réactives oxygénées qui peuvent altérer les lipides, les pigments, les protéines et même les acides nucléiques (Dai et al., 1997). Les rayonnements UV-A sont moins néfastes que les rayonnements UV-B et UV-C sur les plantes (Barta et al., 2004).

La dose ou fluence, qui s’obtient simplement en multipliant la puissance par le temps, dépend de la puissance des lampes et du temps d’exposition. Quoiqu’elles constituent un composant mineur du spectre solaire, les radiations UV-B sont capables d’affecter de manière disproportionnée les processus métaboliques chez les animaux, l’homme, les plantes et les microorganismes. L’intérêt accordé à l’étude des effets de ces radiations sur les plantes prend de plus en plus d’ampleur. Les longueurs d’ondes UV-B sont biologiquement actives, mais elles sont aussi les plus agressives. Toutefois, les niveaux perçus par les plantes dépendent de la latitude et de la durée d’exposition, autrement dit de l’intensité d’exposition (Houghton JT et al., 2001). Chez les plantes, les radiations UV-B peuvent interférer avec la croissance, le développement, la photosynthèse, la floraison, la pollinisation et la transpiration (Rozema et al., 1997). Un grand nombre de publications relatant l’effet de ces radiations sur la reproduction des plantes (Phoenix et al., 2002), ont souligné leur influence sur le développement, la production du fruit incluant le développement des structures reproductives, la formation du nectar, l’activité des pollinisateurs, la viabilité du pollen et la germination, ainsi que la reproduction végétative (Bjorn, 2002).

Outre ces effets, les radiations UV-B induisent des modifications morphologiques au niveau de la feuille et au niveau de la plante entière (Rozema et al., 1997). Par exemple, l’enroulement des feuilles, afin de réduire la surface foliaire touchée par ces rayonnements, est une réponse photo-morphogénique qu’on observe à des doses faibles d’UV-B (Greenberg et al., 1996). L’épaississement de la feuille est une autre stratégie de protection qui peut être accompagnée d’une redistribution de la chlorophylle de sa surface adaxiale (Day and Vogelmann, 1995). Les UV-B peuvent aussi être à l’origine de changements dans la forme de la feuille, résultant peut-être d’une inhibition non homogène de la croissance (Greenberg et al., 1996). Les changements dans la morphologie de la plante, résultat d’une exposition à ce type de radiations, sont dûs en plus grande partie à la balance compétitive entre les espèces qu’aux changements dans la machinerie photosynthétique (Barnes et al., 1990). Outre sa fonction de barrière de protection mécanique, l’épiderme des feuilles joue un rôle assez important dans la protection du mésophylle chlorophyllien sous-jacent contre les effets induits par des rayonnements UV. Ce rôle de filtre de l’épiderme est réalisé grâce aux composés phénoliques, aux flavonoïdes et aux acides hydroxycinamiques. Les flavonoïdes peuvent être présents sous forme de glycosides dans les vacuoles des cellules épidermiques (Strid et al., 1990). Quant aux acides hydroxycinamiques, outre cette forme, ils peuvent être dans la plupart des cas estérifiés dans la cuticule, avec l’hémicellulose de la paroi cellulaire ou même avec des flavonoïdes (Furuya et Galston, 1965).

La comparaison du spectre d’absorption peut fournir un outil assez précis pour l’identification des classes de phénols présents dans les feuilles des plantes. Une bonne corrélation négative entre les absorbances des extraits foliaires totaux et entre les transmittances épidermiques a bien confirmé que l’épiderme était le premier responsable de l’absorption des rayons UV dans les feuilles des plantes (Furuya et Galston, 1965). Par ailleurs, des études, réalisées sur le Sorgho (Sorghum vulgare L.), ont évalué l’impact des rayonnements UV-B sur la biomasse, les teneurs en pigments photosynthétiques, en flavonoïdes et en acide ascorbique ainsi que sur les activités de la peroxydase et de la catalase. Au terme de 60 jours de culture en plein champ à des doses ambiantes normales et élevées de rayonnement UV-B, une diminution de la photosynthèse liée à une baisse de la conductance stomatique est enregistrée chez cette espèce. Cet effet est accompagné par une réduction des teneurs des pigments chlorophylliens et des caroténoïdes (Ambasht et Agrawal, 1998). En revanche, chez le petit pois, aucun effet spécifique direct de ces rayonnements sur les enzymes des voies de biosynthèse de la chlorophylle n’a été observé chez des plantes éclairées, que ce soit avec une lumière visible complétée par des doses de lumière UV-B, ou avec une lumière visible de contrôle précédée par une courte exposition de quelques heures aux UV-B (Strid et Porra, 1992). Selon les auteurs de ce travail, l’effet majeur des radiations UV-B serait une mauvaise régulation génétique des voies de biosynthèse de ces pigments conduisant à leur dégradation.

Les UV et la synthèse des flavonoïdes Récemment, les flavonoïdes ont suscité beaucoup d’intérêt en raison de leurs effets bénéfiques sur la santé humaine. Ils ont des effets antiagrégants plaquettaires, antiviraux, antiallergiques, anti-inflammatoires, anti-tumoraux et des activités antioxydantes (Ross et Kasum, 2002). C’est une classe de composés phénoliques omniprésents dans les plantes, y compris dans les fruits, les légumes et les céréales, que ce soit au niveau de leurs feuilles, de leurs tiges, de leurs fleurs, de leurs fruits ou du pollen. Le terme «flavonoïdes» proviendrait de flavedo, désignant la couche externe des écorces d’oranges. Ils sont reconnus pour jouer de multiples rôles dans les réactions des plantes supérieures contre des agents stressants d’origine différente, allant de la défense contre les pathogènes et les prédateurs à la protection des feuilles contre le rayonnement solaire (Ross et Kasum, 2002). Les anthocyanes comptent parmi les flavonoïdes qui ont fait l’objet de nombreux travaux de recherche. Ce sont des composés solubles dans l’eau qui donnent la couleur pourpre aux feuilles et aux organes (Harborne, 1988). Leur synthèse dans le cytoplasme est suivie par leur séquestration active dans les vacuoles grâce à des pompes à glutathion (Mars et al., 1995). Par exemple, il a été montré que la glutathion S-transférase (GST) est impliquée dans la séquestration vacuolaire de ces pigments chez le maïs. La quercétine est un autre type de flavonoïde ayant une activité antioxydante et utilisé depuis plus de trente ans pour renforcer la résistance aux allergies alimentaires et respiratoires. Ses effets biologiques s’expliquent principalement par son activité anti-oxydante, par une synergie spécifique avec la vitamine C (quercétine et vitamine C se protègent et se régénèrent mutuellement) et par une activité anti-inflammatoire diversifiée et polyvalente.

Rappels sur la biosynthèse de quelques flavonoïdes. Les flavonoïdes proviennent de deux voies principales du métabolisme secondaire des plantes: la voie shikimique et la voie de l’acétate (Ross et Kasum, 2002). Ils possèdent tous un même squelette de base à quinze atomes de carbone constitué de deux unités aromatiques; deux cycles en C6, reliés par une chaîne en C3. Selon leur structure chimique, ils sont classés en flavonols, flavones, flavanones, isoflavones, catéchines, anthocyanes et chalcones (Ross et Kasum, 2002). Les précurseurs de la biosynthèse des anthocyanes sont les flavan-3,4-cis-diol ou leucoanthocyanidines (Heller et Geiger, 1988). L’aglycone de l’anthocyane, qui est aussi le chromophore, est appelé anthocyanidine. Le chromophore est en fait une molécule colorée qui désigne le groupement d’atomes au sein de cette molécule qui est responsable de sa couleur. Cette propriété optique résulte d’une capacité à absorber l’énergie des photons dans une gamme du spectre visible tandis que les autres longueurs d’onde sont transmises ou diffusées. Le plus souvent, les anthocyanes sont glycolysés en position 3 et 5. Les sucres les plus fréquents sont des sucres simples, ce sont des monosaccharides comme le glucose qui est un ose simple et plus particulièrement un aldose, un isomère d’autres sucres comme le mannose et le fructose, de formule C6H12O6, et le galactose qui est un épimère du glucose au 4ème carbone. A leur tour, les sucres peuvent être acylés par l’acide cinnamique de formule C6H5–CH=CHCOOH qui est un acide organique de faible solubilité dans l’eau.

Table des matières

Introduction Générale
CHAPITRE 1 Synthèse Bibliographique
I. Les rayonnements UV
1. Définition et différents types de rayonnements UV
2. Les UV, la croissance des plantes et la machinerie photosynthétique
3. Les UV et la synthèse des flavonoïdes
Rappels sur la biosynthèse de quelques flavonoïdes
Répartition des flavonoïdes dans la plante
Rôles biologiques des flavonoïdes
Les flavonoïdes et la protection contre les UV
II. Les défenses des plantes contre les pathogènes
1. Effet des UV-C sur la résistance des plantes aux pathogènes
2.Effet de la fertilisation azotée sur la résistance des plantes aux pathogènes
III. Les UV et le potentiel de conservation poste-récolte des fruits et légumes
IV. La salinité
1. Effets physiologiques de la salinité
2. Le stress oxydatif : réponse commune à toutes les contraintes
Origine et conséquences du stress oxydatif
Les marqueurs du stress oxydatif
3. Le «Priming» : Une stratégie d’amélioration de la réponse au sel
CHAPITRE 2 Matériel & Méthodes
I. Matériel végétal : la laitue (Lactuca sativa L
1. Classification
2. Culture
3. Modèle d’étude
II. Conduite des expériences
1. Conditions des cultures
1.1. Culture sous serre: Travail réalisé en collaboration avec le GRAB (Groupe de Recherche en Agriculture Biologique
1.2. Culture sous serre en collaboration avec l’INRA Avignon
1.3. Culture hydroponique dans des conditions contrôlées du laboratoire
III. Expériences réalisées
La première expérience est destinée au choix d’une dose d’UV-C non délétère pour l’aspect de la laitue
La seconde expérience a pour objectif d’étudier l’effet des UV-C sur la résistance de laitue Romaine à BC87 et SM
La troisième expérience est destinée à l’étude des effets combinés des UV-C et de
la fertilisation azotée sur la résistance de la laitue Romaine à BC87 et SM
Une quatrième expérience conduite sous serre a pour but d’étudier l’effet des rayonnements UV-C sur le potentiel de conservation après récolte de la laitue
Romaine
Une cinquième expérience conduite dans des conditions contrôlées afin d’étudier l’effet du priming des graines de la laitue romaine par des UV-C sur sa capacité de croissance en condition de salinité
IV. Techniques analytiques
1. Exposition aux radiations UV-C
2. Evaluation de l’état visuel des feuilles
3. Préparation des souches fongiques
4. Calcul de la surface de lésion
5. Quantification des pigments (chlorophylles et caroténoïdes
6. Mesure des paramètres de fluorescence chlorophyllienne par l’Handy PEA
7. Mesure de l’intensité respiratoire
8. Extraction et dosage des composés phénoliques par HPLC
8.1. Extraction
8.2. Principe de l’HPLC
9. Dosage des polyphénols totaux
10. Dosage des flavonoîdes
10.1. Principe
10.2. Manipulation
11. Détermination des teneurs en ascorbate et en déhydroascorbate
12. Détermination des indicateurs du stress oxydatif
12.1. Dosage du malondialdéhyde (MDA
12.2. Dosage du peroxyde d’hydrogène (H2O2
13. Mesure de l’activité anti radicalaire (contre le radical DPPH
14. Mesure de l’activité anti-oxydante totale
15. Extraction et dosage des éléments minéraux
16. Dosage des nitrites et des nitrates
16.1. Principe du dosage
16.2. Préparation de l’extrait à partir de la matière sèche broyée
17. Transformation de la laitue en produit 4ème gamme
17.1. Définition
17.2. Etapes
* Le parage
* Le lavage
* L’essorage
* Le conditionnement
V. Analyses statistiques
CHAPITRE 3 Choix d’une dose non délétère d’UV-C
Résumé
1. Introduction
2. Rappel du protocole expérimental
3. Résultats
3.1. Effet des UV-C sur l’aspect visuel des feuilles
3.2. Effet des différentes doses d’UV-C sur la fluorescence chlorophyllienne de la Romaine
3.3. Effet des différentes doses d’UV-C sur les teneurs en chlorophylle totale
4. Discussion
5. Conclusion
CHAPITRE 4 Effets des rayonnements UV-C sur la résistance de la laitue romaine à BC87 et SM
Résumé
1. Introduction
2. Rappel du protocole expérimental
3. Résultats
3.1. Effet d’un traitement des laitues romaines par des UV-C sur le développement des champignons, Botrytis cinerea et Slerotinia minor, sur leurs feuilles
3.2. Effet du traitement des feuilles par des UV-C sur leur état oxydatif après inoculation avec BC87 et SM
3.3. Evaluation de la réponse antioxydante non enzymatique
Pigments photosynthétiques
Polyphénols totaux
4. Discussion
5. Conclusion
CHAPITRE 5 Effet de la fertilisation azotée et des rayonnements UV-C sur la résistance de la laitue romaine à Botrytis cinerea (BC87) et à Sclerotinia minor (SM)
Résumé
1. Introduction
2.Rappel du protocole expérimental
3.Résultats
3.1. Recherche d’une dose d’azote qui autorise une meilleure résistance aux champignons pathogènes
3.1.1. Fonctionnement photosynthétique des feuilles et fertilisation azotée.
3.1.2. Etat oxydatif de la feuille de laitue romaine et fertilisation azotée
3.1.3. Effet de la fertilisation azotée sur les statuts en azote et en polyphénols
de la feuille de laitue
3.1.4. Effet de la fertilisation azotée sur la réponse de la laitue aux deux  champignons, Botrytis cinerea et Sclerotinia minor
3.2. Effets des rayonnements UV-C sur la résistance de la laitue romaine à BC87 et SM
3.2.1. Effets de l’irradiation avec des UVC sur les teneurs en azote total et nitrique des feuilles avant inoculation
3.2.2. Effets des UV-C sur le comportement de la feuille de laitue vis-à-vis de l’inoculation avec BC87 et SM
Surface de lésion
Teneurs en pigments photosynthétiques
Teneurs en MDA et en H2O2
Teneurs en poluphénols totaux
4. Discussion
5. Conclusion
CHAPITRE 6 Effet des rayonnements UV-C sur le potentiel de conservation après récolte de la laitue romaine
Résumé
1. Introduction
2. Rappel du protocole expérimental
3. Résultats
3.1. Effet des UV-C sur l’aspect visuel des feuilles au cours du stockage
3.2. Effet des UVC sur l’indice de performance photosynthétique (PI
3.3. Effet des UV-C sur l’intensité respiratoire
3.4. Effet des UV-C sur les teneurs en MDA et en H2O2
3.5. Effet des UV-C sur les teneurs en chlorophylle totale
3.6. Effet des UV-C sur les teneurs en Vitamine C
3.7. Effet des UV-C sur les teneurs en caroténoïdes au cours du stockage.
3.8. Effet des UV-C sur les teneurs en polyphénols au cours du stockage
4. Discussion
5. Conclusion
CHAPITRE 7 Effet du priming aux UV-C sur la capacité de croissance de la laitue romaine en présence d’une contrainte saline
Résumé
1.Introduction
2. Rappel du protocole expérimental
3. Article
Conclusions générales et perspectives
Références bibliographiques
Annexes

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