Evaluation des risques environnementaux de trois insecticides sélectifs sur un organisme non ciblé Palaemon adspersus

Evaluation des risques environnementaux de
trois insecticides sélectifs sur un organisme non
ciblé Palaemon adspersus

Présentation de l’espèce

Palaemon adspersus (Rathke, 1837) communément appelée « bouquet balte ou chevrette », a une longueur qui varie entre 5 à 11 cm; les femelles sont de plus grande de taille par rapport aux mâles. Leur corps est translucide strié de fines rayures transversales au niveau des articulations et présente des chromatophores sombres sur la moitié ventrale du rostre. Ce dernier est long et légèrement recourbé vers le haut dans sa partie distale, surtout chez les plus grands individus avec 6 à 7 dents dorsales et 4 à 5 ventrales. Ces Crevettes possèdent des pinces très longues dotées d’une grande force et présente une bosse au niveau dorsal (Fig. 1). Figure 1. Photographie de P. adspersus (Rathke, 1837) (Photo personnelle). Cette Crevette à une valeur commerciale importante dans le domaine de la pèche, elle est utilisée comme appât vivant pour la pêche sportive (Manent & Abella-Gutiérrez, 2006). Elle est également une précieuse ressource de production en aquaculture (Holthuis, 1980). La Crevette P. adspersus a été décrite comme espèce opportuniste omnivore et charognarde (Guerao & Ribera, 1996), se nourrissant d’une grande variété d’organismes benthiques (crustacés, polychètes et mollusques), détritus organiques et matériels végétals; ses habitudes alimentaires peuvent varier sensiblement selon les changements dans leur cycle de vie, l’âge, la taille et la disponibilité et distribution des ressources alimentaires dans l’environnement (Guerao, 1994 ; Guerao & Ribera, 1996 ; Jayachandran, 2001 ; Kuprijanov et al., 2015). La position systématique de P. adspersus selon la dernière classification est la suivante: 1 cm 7 Embranchement: Arthropoda Sous-Embranchement: Crustacea Classe: Malacostraca Sous-Classe: Eumalacostraca Super Ordre: Eucarida Ordre: Decapoda Sous-Ordre: Pleocyemata Infra-Ordre: Caridea Super-Famille: Palaemonoidea Famille: Palaemonidae Sous-Famille: Palaemoninae Genre: Palaemon Espèce: adspersus (Rathke, 1837). 

Anatomie générale d’une Crevette

Comme tous les arthropodes, les Crustacés ont un exosquelette formé d’une cuticule assez épaisse. Leur corps est composé de plusieurs segments, chacun portant une paire d’appendices à deux branches. Au cours de l’évolution, les segments et certaines parties du corps se sont spécialisés. Les appendices prenant part à la respiration, à la nage, à la reptation et à l’alimentation se sont fortement modifiés et sont devenus mâchoires, organes reproducteurs ou autres, quand ils n’ont pas régressé ou disparu. La tête est généralement fusionnée avec plusieurs segments pour former le céphalothorax et l’abdomen lui fait suite (Fig. 2). La carapace part de la tête et recouvre la plus grande partie du corps, voire le corps entier. La tête porte deux paires d’organes sensoriels: antennes et une paire de mandibules, derrière lesquelles se trouvent deux autres paires de pièces buccales: les maxilles. Elle comprend également une paire d’yeux composés. Le céphalothorax porte des appendices servant à la locomotion et à la respiration. Ces derniers, appelés branchies, sont protégés par la carapace. D’autres appendices forment des 8 pinces tandis que ceux situés sur l’abdomen servent à la locomotion ou à la respiration, mais sont souvent de taille réduite. La portion caudale, le telson, est parfois utilisée pour la nage. La cavité principale du corps fait partie du système circulatoire dans lequel le sang est pompé par un cœur dorsal (Fig. 3). L’intestin est un tube droit souvent pourvu d’un moulin gastrique, comparable à un gésier servant à broyer les aliments, et d’une paire de glandes digestives qui sécrètent des sucs et absorbent les nutriments. Des structures comparables aux reins des vertébrés sont situées près des antennes. Le système nerveux est composé de ganglions cérébraux, à proximité des organes des sens, d’une chaîne ganglionnaire et de nerfs situés sous l’intestin dans la partie ventrale. Figure 2. Anatomie externe d’une Crevette. (Anatomie d’une Crevette: Crusta-Fauna.htm). Figure 3. Anatomie interne d’une Crevette. (Anatomie d’une Crevette: Crusta-Fauna.htm).

Distribution géographique et site d’échantillonnage

La Crevette Baltique P. adspersus vie dans les milieux peu profonds (0 – 6 m) (Solari et al., 2017). Elle est un habitant commun des côtes, des lagunes et des estuaires répartis de la mer Baltique, le long de la côte occidentale de la Norvège, le golfe de Gascogne et les îles britanniques, jusqu’à la côte marocaine et la Méditerranée, la mer Adriatique, la mer Noire et les eaux de l’Atlantique Nord-Ouest (Hayward & Ryland, 1996 ; Zariquiey-Álvarez, 1968 ; Lapińska & Szaniawska, 2006 ; González-Ortegón et al., 2015). Notre récolte d’échantillons a été effectuée au niveau de la lagune El-Mellah où la Crevette est très abondante. La lagune se situe à l’extrême Nord-Est de la côte Algérienne (9,5 km à l’ouest de la ville d’El-Kala et 48,75 km à l’est de la ville d’Annaba), en bordure de la méditerranée entre le cap rosa et le cap roux. Elle s’étend du Nord au Sud sur 4 km et d’Est en Ouest sur 2 km (Messerer, 1999), couvrant ainsi une superficie de 865 hectares qui communique avec la mer par un chenal d’environ 870 m de longueur et 15 m de largeur (ONDPA, 2005) et reçoit les eaux douces des oueds Mellah et Bouaroug au sud et R’kibet à l’ouest (Derbal et al., 2005). Ses coordonnées géographiques au centre sont de 36° 53′ 565 Nord – 8° 19’ 560 Est et la profondeur maximale est de 6,40 m. La lagune est un plan d’eau saumâtre dont la température et la salinité varient de 1,40 à 30,50°C et de 15,90 à 37,10 ‰, respectivement (Draredja et al., 2012). Figure 4. Localisation géographique de la zone d’échantillonnage: la lagune ElMellah, El-Kala (Algérie Nord-Est). 10 2.4. Elevage des Crevettes Une fois péchées, les Crevettes sont transportées dans un bac en plastique d’une contenance de 30 L d’eau de mer. L’aération est assurée par brassage permanent de l’eau jusqu’à l’arrivée au laboratoire. Les Crevettes capturées sont transférées dans des aquariums d’une capacité de 80 L, constitués d’une fine couche de sable fin de 4 cm d’épaisseur avec quelque galet. L’éclairage se fait à la lumière naturelle. La salinité est proche de celle de l’eau de mer 37 ‰ et la température est comprise entre 22 et 27°C. L’eau doit être propre et continuellement oxygénée par des pompes à air (Rena 301: 2204, 651/mn). En captivité dans leur nouveau milieu les Crevettes se nourrissent de la chair fraîche des haricots de mer distribuée en fin de journée. Le nettoyage des aquariums est effectué chaque matin, en enlevant la nourriture en excès ainsi que les coquilles. 2.5. Datation des Crevettes Il est possible de subdiviser le cycle de mue chez les Crustacés Décapodes en quatre périodes essentielles, selon la nomenclature adoptée par Drach & Tchernigovtzeff (1967) et Cognie (1970): deux périodes en post mue (A et B), une intermue (C) et une prémue (D), qui est elle-même subdivisée en trois stades ; stade D0 – D1, D2, D3. Le stade E correspond à l’exuviation de l’animal avec rejet de l’ancienne cuticule, étape qui se produit à n’importe quel moment de la journée chez P. adspersus contrairement a Penaeus kerathurus dont l’exuviation se produit uniquement la nuit (Morsli, 2016). La méthode de datation utilisée dans notre travail a été empruntée à Robertson et al. (1987). Cette datation simple, rapide et efficace est basée sur la morphogenèse des soies au niveau des appendices fins. L’organe de référence prélevé est l’extrémité de l’uropode qui a été observé sous microscope entre lame et lamelle, dans de l’eau d’élevage.

Table des matières

1. INTRODUCTION
2. MATERIEL ET METHODE
2.1. Présentation de l’espèce
2.2. Anatomie générale d’une crevette
2.3 Distribution géographique et site d’échantillonnage
2.4. Elevage des Crevettes
2.5. Datation des Crevettes
2.6. Présentation des xénobiotique
2.6.1. Diflubenzuron
2.6.2. Méthoxyfénozide
2.6.3. Spiromesifen
2.7. Dose et traitement
2.8. Prélèvement des organes
2.9. Croissance pondérale
2.10. Détermination de la composition biochimique de la cuticule
2.11. Dosage des biomarqueurs
2.11.1. Dosage du glutathion
2.11.2. Dosage de l’acétylcholinestérase
2.11.3. Dosage de la glutathion S-transférase
2.11.4. Extraction et dosage du malondialdéhyde
2.12. Extraction et dosage des lipides totaux
2.13. Extraction et dosage des protéines
2.14. Analyse statistique
3. RESULTATS
3. 1. Effets des régulateurs de croissance sur Palaemonadspersus
3.1.1. Effet sur le poids
3.1.2. Effet sur la composition biochimique de la cuticule
3.1.2.1. Effet sur le taux de la chitine cuticulaire
3.1.2.2. Effet sur le taux des protéines cuticulaires
3.1.2.3. Effet sur le taux des sels calciques cuticulaire
3.1.3. Effet sur les biomarqueurs
3.1.3.1. Effet sur le taux du glutathion (GSH)
3.1.3.2. Effet sur l’activité spécifique de l’acétylcholinestérase
3.2. Effet du spiromesifen sur Palaemonadspersus
3.2.1. Essai insecticide
3.2.2. Effets du spiromesifen sur la glutathion S-transférase
3.2.3. Effets du spiromesifen sur l’acétylcholinestérase. 46
3.2.4. Effets du spiromesifen sur le taux du glutathion 48
3.2.5. Effets du spiromesifen sur les taux de lipides totaux corporels
3.2.6. Effets du spiromesifen sur le taux de malondialdéhyde
4. DISCUSSION
4.1. Effet du dimilin et du mét/oxyfenozide sur P. adspersus
4.1.1. Effet sur le poids corporel de P. adspersus 55
4.1.2. Effet sur la composition biochimique de la cuticule
4.1.2.1. Effet sur la chitine
4.1.2.2. Effet sur les protéines
4.1.2.3. Effet sur les sels calciques
4.1.3. Effets du dimilin et du methoxyfenozide sur les biomarqueurs
4.1.3.1. Effet sur le taux du glutathion
4.1.3.2. Effet sur l’activité de l’acétylcholinestérase
4.2. Effet du spiromesifen sur Palaemonadspersus
4.2.1. Toxicité à l’égard de P. adspersus
4.2.2. Impact sur les biomarqueurs
4.2.2.1. Effets sur l’activité de la glutathion S-transférase
4.2.2.2. Effets sur l’activité de l’acétylcholinestéras
4.2.2.3. Effets sur le taux du glutathion
4.2.2.4. Effets sur le taux des lipides corporels
4.2.2.5. Effets sur le taux du malonedialdéhyde
5. CONCLUSION ET PERSPECTIVES
6. RESUMES
7. REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
ANNEXE PRODUCTIONS SCIENTIFIQUE

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