Diagramme d’une boite de kartman normale (A)

Diagramme d’une boite de kartman normale (A)

L’utilisation d’insecticide systémique fait aussi partie des méthodes ciblant les puces sur leur hôte. Cette méthode a été expérimentée dans des foyers de peste surtout à cause de son coût réduit et de sa précision par rapport à l’épandage d’insecticide en poudre (Gratz et al 1980, Borchert et al 2001, Leirs et al 2001, Rood and Poché 2010). Nous avons étudié la faisabilité d’une telle technique en laboratoire sur X. cheopis en utilisant le fipronil (Article 6). Le choix de l’insecticide a été motivé par son accessibilité (utilisé contre les termites), et ses propriétés qui permettent de faire une comparaison de son efficacité par contact et par la voie systémique. C’est un insecticide qui n’a jamais été utilisé contre les puces des rats à Madagascar. Par ailleurs aucune résistance à cette famille d’insecticide (phenylpyrazole) n’a encore été enregistrée, même si une résistance croisée aux cyclodiènes pourrait exister (Bass et al 2004a, Kristensen 2005). Nos résultats ont montré que cet insecticide est plus toxique par voie orale que par contact, en induisant une mortalité importante chez des populations que nous avons trouvé les plus résistantes à d’autres insecticides (Article 3). La précision des résultats pourrait être améliorée avec un plus grand nombre de rats inclus dans le test. Une partie des puces utilisées au cours des tests a été tuée par le comportement de toilettage du rat. Un dispositif de contention plus adapté aurait évité cette mortalité non liée à l’effet du fipronil (Johnson et al 2014). L’utilisation de produit pur serait une amélioration pour la précision des dosages (Leirs et al 2001).

Pour évaluer l’utilisation opérationnelle de cette technique, un essai sur terrain a aussi été effectué comme une étude pilote visant à développer les méthodologies nécessaires pour mener à bien une lutte anti vectorielle (données non publiées). Lors de cette étude sur terrain, les appâts contenant l’insecticide systémique (Article 5) ont été dispersés dans un village dans des boîtes de kartman (82 boîtes). De la farine de blé a été déposée dans les boîtes de kartman contenant l’appât afin de repérer les traces du passage des rongeurs visitant les boîtes. Cette étude a été menée en saison sèche (août 2015) et les appâts ont été déposés à l’intérieur et à l’extérieur des maisons. Après une semaine, les rongeurs de ce village ont été capturés (pièges Sherman et BTS) puis épucés pour établir l’indice pulicidien entre les rongeurs qui ont consommé ou non l’insecticide systémique. Un colorant incorporé dans l’appât et visualisable sous microscope à fluorescence dans les poils et les vibrisses des rongeurs ont permis d’identifier les rongeurs qui ont consommé l’appât contenant l’insecticide (Rahelinirina et al 2010).

Comme principaux résultats, nous avons trouvé que la grande majorité des appâts a été consommée, ce qui atteste de l’appétence de la nourriture et un bon emplacement des appâts, contrairement à ce qui a été trouvé dans certaines études (Borchert et al 2001, Leirs et al 2001). L’observation de la fluorescence due à la présence de rhodamine sur les poils a montré que 2 puces se trouvaient sur les rongeurs marqués (n=15, indice pulicidien =0,13), contre 10 puces sur les rongeurs non marqués (n=11, indice pulicidien =0,9). Malgré les limites de cette étude préliminaire dans le temps et l’espace (absence de village témoin), le faible indice pulicidien observé chez les rats marqués par rapport à ceux non marqués pourrait être attribué à l’effet de l’insecticide systémique. Cette étude a aussi permis d’identifier des problèmes et proposer des solutions pour la mise en œuvre sur terrain de la méthode. Comme perspective, il serait nécessaire d’effectuer des captures préliminaires, d’ajouter des villages témoins, de faire le traitement dans au moins deux villages et enfin, de faire des captures échelonnées pour voir l’effet du traitement dans le temps.

D’autres insecticides ayant une propriété systémique ont été testés en laboratoire ou sur terrain. Par exemple, une efficacité sur le terrain au bout de 7 jours a été rapportée avec l’imidacloprid (neonicotinoide). Cependant l’attractivité de l’appât contenant cet insecticide a été problématique (Borchert et al 2001). Ce même insecticide a permis de réduire de 98% l’indice pulicidien de R. norvegicus en seulement 48 heures à Los Angeles, démontrant ainsi un fort effet à court terme (Rood and Poché 2010). Au cours d’une étude sur terrain, un régulateur de croissance, le fluazuron a été utilisé avec succès pour réduire l’indice pulicidien chez les rongeurs (Slowik et al 2001). Ces insecticides ont des modes d’actions différents du fipronil et pourraient être utilisés en alternance pour diminuer la pression insecticide.

 Autres insecticides alternatifs pour la lutte contre les puces de rat

Pour contrer les mécanismes de résistance développés par les insectes aux insecticides conventionnels, de nouvelles molécules ayant des structures et des cibles différentes ont été élaborées (Nauen 2007). Ces molécules sont largement utilisées pour contrôler les parasites des animaux domestiques notamment C. felis, mais peu d’études ont été faites sur les puces de rat (Rust and Dryden 1997, Rust 2005, Beugnet and Franc 2012). Les IGR (Insect Growth Regulator) empêchent le développement des larves en inhibant la nymphose (méthoprène, pyriproxyfen) ou la synthèse de chitine (diflubenzuron) (Beugnet and Franc 2012). Des tests en laboratoire ont montré l’activité du méthoprène en inhibant l’émergence de X. cheopis adulte (Chamberlain and Becker 1977). Le pyriproxyfène et le méthoprène peuvent agir par contact et ont des actions ovicides chez les femelles de C. felis (Rust and Dryden 1997). Nous avons vu plus haut que ces IGR peuvent aussi réduire la densité des adultes et agir par la voie systémique (Slowick 2001). Les IGR ont été utilisés en application topique sur les chiens et les chats (Beugnet and Franc 2012), et une adaptation pour contrôler les puces des rats, utilisant un dispositif proche des boîtes à appâts a été mise en œuvre avec succès en Ouganda (Boegler et al 2014).

Concernant les insecticides d’origine biologique, les conidies des champignons de l’espèce Metarhizium anisopliae et Beauveria bassiana réduisent la survie des larves de X. brasiliensis (Mnyone et al 2012). L’acide nodulisporique est un insecticide extrait du champignon Nodulisporium sp (Ondeyka et al 1997). Ses propriétés systémiques ont été testées avec succès contre C. felis en réduisant leur densité de 99% après 48 heures d’administration par voie orale ou cutanée chez les chiens (Shoop et al 2001) .La toxine bactérienne dérivée de Bacillus thuringiensis avait induit une mortalité chez les larves de X. cheopis et différentes malformations chez les adultes (Maciejewska et al 1988). Les insecticides qui agissent en ciblant les stades immatures sont parfois utilisés avec des insecticides qui ciblent les adultes (Rust and Dryden 1997, Boegler et al 2014). Ces nouvelles molécules constituent des alternatives de plus en plus étudiées en laboratoire et sur terrain afin de contrôler les puces des rats (Borchert et al 2001, Leirs et al 2001, Boegler et al 2014).